引言

對于快速發(fā)展的蛋白質(zhì)治療和基于重組抗原的疫苗生產(chǎn)領(lǐng)域而言，蛋白質(zhì)制劑的穩(wěn)定性至關(guān)重要。Zeta 電位是剪切面上的表面電荷密度，是用于預(yù)測這些制劑穩(wěn)定性的參數(shù)之一。Zeta 電位還被用作配體添加后構(gòu)象變化的指標(biāo)。傳統(tǒng)的 Zeta 電位測量方法通常采用經(jīng)典的激光多普勒測速技術(shù)來測定懸浮蛋白質(zhì)的電泳遷移率。本文介紹了一種利用相位分析方法來測定 Zeta 電位的技術(shù)，該技術(shù)采用了一種能夠消除電滲運動的電極設(shè)計。使用該技術(shù)，可以在極其廣泛的溶劑條件下（包括接近生理離子強度的條件）測量 Zeta 電位。這極大地拓展了可測定 Zeta 電位的實驗條件范圍。

實驗

使用布魯克海文儀器公司的 NanoBrook ZetaPALS進行 Zeta 電位測量。

為了提高靈敏度，采用相位分析光散射（PALS）技術(shù)來檢測帶電蛋白質(zhì)的運動。傳統(tǒng)的激光多普勒電泳技術(shù)的原理是利用散射體運動引起的散射光頻率偏移來測定蛋白質(zhì)的運動。然而，通過識別并測量散射光的相位偏移，可以對粒子運動進行更為靈敏的測量¹。光路設(shè)置如圖1所示。

為了進一步提高靈敏度，這些測量采用了如圖2所示的Uzgiris型電極組件。這樣的電極設(shè)計可有效抑制毛細(xì)管型樣品池中的電滲運動。電滲運動是指在施加電場時，由于壁面效應(yīng)引起的流體的整體運動。這種整體運動需要最小化，因為它會干擾儀器的靈敏度。帶電蛋白質(zhì)在施加電場的作用下移動。

測量在25℃下進行。

蛋白質(zhì)購自 Sigma Aldrich，直接使用。

原理

由于 Zeta 電位與流體動力學(xué)單元上的電荷相對應(yīng)，因此它是討論表面電荷最直觀的方式。然而，電泳光散射技術(shù)測量的量是電泳遷移率（μ_ep）。

在 PALS 技術(shù)中，首先通過測量得到散射光的相位偏移（Φ），然后通過以下方程₁將其與遷移率相關(guān)聯(lián)。

其中，<A>是平均散射振幅，q 是散射矢量，其大小為 (4πn/λ)sin(θ/2)，其中 n 是介質(zhì)的折射率，λ 是用于探測樣品的光的波長，θ 是散射角。E 是施加的電場強度。積分在測量期間進行。

通過模型將電泳遷移率轉(zhuǎn)換為Zeta電位。模型的選擇取決于兩個參數(shù)：顆粒大小和雙層厚度。通常，Smoluchovski模型適用于水溶液，而Huckel模型適用于非水溶液。在這里，使用如下所示的 Smoluchovski 模型將測定的電泳遷移率轉(zhuǎn)換為 Zeta 電位。

其中，ε₁是液體的介電常數(shù)，ε₀是真空的介電常數(shù)，η是液體粘度。

參考文獻

¹Mobility Measurements by Phase Analysis, Walther W. Tscharnuter, Applied Optics, 40(24), August 2001, 3995-4003

結(jié)果

相位分析中典型的相位-時間曲線圖。

各種蛋白質(zhì)的 Zeta 電位值

鹽含量對溶菌酶 Zeta 電位的影響。注意，鹽含量降低會導(dǎo)致 Zeta 電位值升高。

結(jié)論

ZetaPALS 可用于測定高鹽體系中蛋白質(zhì)的 Zeta 電位。

ZetaPALS 可用于測定高鹽體系中蛋白質(zhì)的 Zeta 電位。鹽含量降低會導(dǎo)致靜電屏蔽效應(yīng)減弱，從而使 Zeta 電位值升高。